近年來,隨著對外泌體的研究不斷深入,外泌體作為細胞間通訊的重要工具,在多種生物學(xué)和醫(yī)學(xué)領(lǐng)域中展現(xiàn)了巨大的應(yīng)用潛力。外泌體是一類由細胞分泌的納米顆粒,廣泛存在于體液中,如血液、尿液、唾液等。外泌體的獨特結(jié)構(gòu)及其所攜帶的生物活性物質(zhì),如蛋白質(zhì)、RNA、DNA等,使得其在腫瘤診斷、藥物遞送、免疫調(diào)節(jié)等方面具有重要的研究價值。
為了進一步解析外泌體的結(jié)構(gòu)與功能,透射電子顯微鏡(TransmissionElectronMicroscopy,TEM)作為一種高分辨率的成像技術(shù),被廣泛應(yīng)用于外泌體研究中。電鏡染色是電鏡技術(shù)中至關(guān)重要的一步,它可以增強外泌體在電鏡下的對比度,幫助研究者清晰觀測其超微結(jié)構(gòu)。如何正確進行外泌體電鏡染色?在本文中,我們將為大家詳細介紹外泌體電鏡染色的關(guān)鍵步驟與技巧。
外泌體電鏡染色的第一步是樣品的準備。為了獲得高質(zhì)量的電鏡圖像,外泌體樣品的分離和純化是非常重要的步驟。常用的外泌體分離方法包括超速離心法、密度梯度離心法和免疫親和捕獲法等。
超速離心法:這是目前最常用的外泌體分離方法,通過多步離心逐步去除大顆粒物質(zhì),最終獲得富含外泌體的上清液。
密度梯度離心法:進一步提高外泌體的純度,將其與其他細胞碎片、蛋白質(zhì)等分開。采用蔗糖或碘化銫等密度梯度介質(zhì),可以在分離過程中更好地保留外泌體的完整性。
免疫親和捕獲法:利用外泌體膜表面特異性標志物(如CD63、CD81等)進行免疫捕獲,能夠進一步提高外泌體的特異性,但對設(shè)備要求較高。
樣品分離后,應(yīng)立即進行電鏡樣品的制備和固定,以保證外泌體結(jié)構(gòu)的穩(wěn)定性。
為了確保外泌體樣品在電鏡下的形態(tài)保持不變,固定步驟至關(guān)重要。一般采用化學(xué)固定劑如戊二醛(glutaraldehyde)進行固定。
固定過程:在分離出的外泌體樣品中加入2.5%戊二醛溶液,并在室溫下孵育15-30分鐘。戊二醛能夠交聯(lián)外泌體膜蛋白,形成牢固的交聯(lián)網(wǎng)狀結(jié)構(gòu),從而保護外泌體的原生形態(tài)。
脫水過程:固定后的外泌體樣品需要經(jīng)過梯度乙醇脫水處理,常見的乙醇梯度為30%、50%、70%、90%、100%。脫水的目的是去除樣品中的水分,防止樣品在真空環(huán)境下發(fā)生收縮或變形。
在此過程中,需注意固定劑的濃度及孵育時間的控制,過長的固定時間可能會導(dǎo)致樣品過度交聯(lián),影響其電鏡成像質(zhì)量。
外泌體樣品的固定和脫水完成后,需要將樣品轉(zhuǎn)移到電鏡載網(wǎng)(grid)上,并進行薄膜準備。電鏡載網(wǎng)通常由銅或鎳材料制成,其表面涂有一層碳或硅膜,以增強樣品的附著力。
樣品上載:將一小滴外泌體懸液滴加到電鏡載網(wǎng)上,讓其自然干燥。樣品可以通過重力作用沉積在載網(wǎng)表面。
薄膜準備:為了避免樣品在觀察過程中受到電子束的損傷,載網(wǎng)表面可以加上一層厚度為幾納米的碳膜或硅膜。這層膜既可以增強樣品的穩(wěn)定性,又不會影響電子的穿透性。
當樣品成功沉積在載網(wǎng)上后,即可進入下一步——染色。
外泌體的電鏡染色主要是為了提高其在透射電鏡下的成像對比度。由于外泌體本身較小且無電子密度差異,其在電鏡下的成像往往對比度較低,因此需要通過重金屬染色提高對比度。常用的電鏡染色劑包括磷鎢酸(phosphotungsticacid,PTA)和醋酸鈾(uranylacetate)。
磷鎢酸染色:是一種常用的負染色技術(shù),通過在外泌體周圍形成對比強烈的背景來突出外泌體的結(jié)構(gòu)細節(jié)。使用1%-2%磷鎢酸溶液進行染色,操作簡單,成像效果較好。
醋酸鈾染色:是一種較為經(jīng)典的正染色技術(shù),能夠直接與外泌體的膜蛋白或脂質(zhì)結(jié)合,形成高電子密度區(qū)域,從而增強外泌體的對比度。
染色步驟完成后,需將樣品自然晾干,以便進行透射電鏡的成像觀察。
在經(jīng)過電鏡染色之后,外泌體樣品的處理工作接近尾聲。電鏡成像過程中的一些細節(jié)操作以及成像質(zhì)量的控制,也會對最終的研究結(jié)果產(chǎn)生顯著影響。因此,接下來我們將繼續(xù)探討電鏡成像的步驟和優(yōu)化技巧,以及外泌體電鏡染色應(yīng)用中的一些常見問題和解決方案。